ИММУННОЛОГИЧЕСКИЕ И ФУНКЦИОНАЛЬНЫЕ ПОКАЗАТЕЛИ КРЫС В МОДЕЛИ ПРИНУДИТЕЛЬНОГО ПЛАВАНИЯ С ПРИМЕНЕНИЕМ ПОТЕНЦИАЛЬНЫХ АДАПТОГЕНОВ
PDF

Ключевые слова

физическая нагрузка
адаптация
крысы
нутрицевтики
экстракт зеленого чая
аммоний
иммунитет

Как цитировать

Гончаров, Н. В., Корф, Е. А., Кудрявцев, И. В., Серебрякова, М. К., Добрылко, И. А., Новожилов, А. В., & Миндукшев, И. В. (2020). ИММУННОЛОГИЧЕСКИЕ И ФУНКЦИОНАЛЬНЫЕ ПОКАЗАТЕЛИ КРЫС В МОДЕЛИ ПРИНУДИТЕЛЬНОГО ПЛАВАНИЯ С ПРИМЕНЕНИЕМ ПОТЕНЦИАЛЬНЫХ АДАПТОГЕНОВ. Российский физиологический журнал им. И. М. Сеченова, 106(11), 1350–1369. https://doi.org/10.31857/S0869813920110060

Аннотация

Цель работы состояла в исследовании влияния разных доз двух соединений аммония, хлорида (ХА) и карбоната (КА), а также их сочетания с декофеинизированным экстрактом зеленого чая (ЭЗЧ) на иммунологические показатели периферической крови крыс при физической нагрузке высокой интенсивности. С использованием гематологического анализатора и проточного цитофлуориметра установлены изменения абсолютного и относительного количества гранулоцитов, лимфоцитов, естественных киллеров, наивных и зрелых эффекторных клеток, а также некоторых минорных фракций лимфоцитов через сутки после окончания цикла принудительного плавания. Иммунологические показатели сопоставлены с продолжительностью плавания в последний день нагрузки и со средней продолжительностью за 4 дня предельной нагрузки. Выявленные изменения свидетельствуют о высокой адаптогенной эффективности хлорида аммония в дозе 20 мг/кг, поскольку животные этой группы показали высокие функциональные результаты и у них не найдено признаков дезадаптации и перенапряжения иммунитета. Карбонат аммония в дозе 10 мг/кг приводит к аналогичному повышению функциональных результатов, но это сопряжено с мобилизацией клеточного иммунитета крыс. Повышение дозы карбоната аммония в два раза ведет к срыву адаптации. ЭЗЧ не способствует повышению физической работоспособности, однако оказывает в целом позитивное влияние на состояние иммунной системы животных. Сочетание ЭЗЧ с солями аммония не приводит к существенному улучшению функциональных показателей и в целом негативно влияет на клеточный иммунитет животных группы ЭЗЧ+КА10, в меньшей степени – группы ЭЗЧ+ХА20.

https://doi.org/10.31857/S0869813920110060
PDF

Литература

Campbell J.P., Turner J.E. Debunking the Myth of Exercise-Induced Immune Suppression: Redefining the Impact of Exercise on Immunological Health Across the Lifespan. Front. Immunology. 9:648. 2018.

Maggini S., Pierre A., Calder P.C. Immune Function and Micronutrient Requirements Change over the Life Course. Nutrients. 10(10). 2018. pii: E1531.

Teixeira A.M., Rama L., Carvalho H.M., Borges G., Carvalheiro T., Gleeson M., Alves F., Trindade H., Paiva A. Changes in naïve and memory T-cells in elite swimmers during a winter training season. Brain. Behav. Immun. 39:186-193. 2014.

Goncharov N., Maevsky E., Voitenko N., Novozhilov A., Kubasov I., Jenkins R., Avdonin P. Nutraceuticals in sports activities and fatigue. In: Nutraceuticals: Efficacy, Safety and Toxicity. Gupta R.C. (Ed.). Amsterdam. Acad. Press/Elsevier. 177-188. 2016.

Novozhilov A.V., Tavrovskaya T.V., Voitenko N.G., Maslova M.N., Goncharov N.V., Morozov V.I. Efficacy of green tea extract in two exercise models. Bull. Exp. Biol. Med. 158(3):42-345. 2015.

Korf E.A., Kubasov I.V., Novozhilov A.V., Matrosova E.V., Tavrovskaya T.V., Goncharov N.V., Vonsky M.S., Runov A.L., Kurchakova E.V. Green tea extract increases the expression of genes responsible for regulation of calcium balance in rat slow-twitch muscles under conditions of exhausting exercise. Bull. Exp. Biol. Med. 164(1):6-9. 2017.

Гончаров Н.В., Миндукшев И.В., Новожилов А.В., Корф Е.А., Тавровская Т.В., Терпиловский М.А., Хмелевской Д.А., Скверчинская Е.А., Кривченко А.И. Адаптивные биохимические изменения эритроцитов крысы после цикла принудительного плавания с применением экстракта зеленого чая и аммонийного прекондиционирования. Рос. физиол. журн. 104(12):1428-1441. 2018. [Goncharov N.V., Mindukshev I.V., Novozhilov A.V., Korf E.A., Tavrovskaya T.V., Terpilovsky M.A., Khmelevskoy D.A., Skverchinskaya E.A., Krivchenko A.I. Adaptive biochemical changes of rat erythrocytes after the cycle of forced swimming with the use of green tea extract and ammonium preconditioning. Russ. J. Physiol. 104(12):1428-1441. 2018. (In Russ)].

Baidyuk E.V., Sobolev V.E., Korf E.A., Mindukshev I.V., Krivchenko A.I., Goncharov N.V. Ultrastructural Characteristics of Slow and Fast Twitch Muscle Fibers of Rats after a Forced Swimming Cycle against a Background of Introduction of Green Tea Extract and Ammonium Salts. Cell and Tissue Biol. 14(1):65–73. 2020.

Korf E.A., Mindukshev I.V., Novozhilov A.V., Krivchenko A.I., Goncharov N.V. Ammonium Salts Increase Physical Performance and Reduce Blood Lactate Level in Rats in a Model of Forced Swimming. Bull. Exp. Biol. Med. 168(5): 610-613. 2020.

Novozhilov A.V., Mindukshev I.V., Korf E.A., Krivchenko A.I., Goncharov N.V. Ammonium salts promote the functional adaptation of rat erythrocytes in the model of forced swimming. Bull. Exp. Biol. Med. 168(4):444-448. 2020.

Greenham G., Buckley J.D., Garrett J., Eston R., Norton K. Biomarkers of Physiological Responses to Periods of Intensified, Non-Resistance-Based Exercise Training in Well-Trained Male Athletes: A Systematic Review and Meta-Analysis. Sports Med. 48(11):2517-2548. 2018. doi:10.1007/s40279-018-0969-2

Squier M.K., Sehnert A.J., Cohen J.J. Apoptosis in leukocytes. J. Leukoc. Biol. 57(1): 2-10. 1995.

Marchi N., Johnson A.J., Puvenna V., Johnson H.L., Tierney W., Ghosh C., Cucullo L., Fabene P.F., Janigro D. Modulation of peripheral cytotoxic cells and ictogenesis in a model of seizures. Epilepsia. 52(9):1627-1634. 2011.

Gustafson M.P., DiCostanzo A.C., Wheatley C.M., Kim C.H., Bornschlegl S., Gastineau D.A., Johnson B.D., Dietz A.B. A systems biology approach to investigating the influence of exercise and fitness on the composition of leukocytes in peripheral blood. J. Immunother. Cancer. 5:30. 2017. doi: 10.1186/s40425-017-0231-8

Timmons B.W., Cieslak T. Human Natural Killer Cell Subsets and Acute Exercise: A Brief Review. Exerc. Immunol. Rev. 14:8-23. 2008.

Terra R., Gonçalves da Silva S.A., Pinto V.S., Dutra P.M.L. Effect of exercise on immune system: response, adaptation and cell signaling. Rev. Bras. Med. Esporte. 18(3):208-214. 2012.

Nascimbeni M., Pol S., Saunier B. Distinct CD4+ CD8+ double-positive T cells in the blood and liver of patients during chronic hepatitis B and C. PLoS One. 6(5):e20145. 2011.

de Meis J., Aurélio Farias-de-Oliveira D., Nunes Panzenhagen P.H., Maran N., Villa-Verde D.M., Morrot A., Savino W. Thymus atrophy and double-positive escape are common features in infectious diseases. J. Parasitol. Res. 2012:574020. 2012.

Overgaard N.H., Jung J.W., Steptoe R.J., Wells J.W. CD4+/CD8+ Double-Positive T Cells: More Than Just a Developmental Stage? J. Leukoc. Biol. 97(1):31-38. 2015. doi: 10.1189/jlb.1RU0814-3822015

Kim H.P., Imbert J., Leonard W.J. Both Integrated and Differential Regulation of Components of the IL-2/IL-2 Receptor System. Cytokine Growth. Factor Rev. 17(5):349-366. 2006. doi: 10.1016/j.cytogfr.2006.07.003

Barnett J.B. Consequences of Blocking the Choreography of Double Negative Thymocyte Maturation. In: Signaling Mechanisms Regulating T Cell Diversity and Function. J. Soboloff & D.J. Kappes (Eds.). Boca Raton (FL): CRC Press/Taylor & Francis. Chapter 1. PMID:30427639 NBK532331 2018. DOI: 10.1201/9781315371689-1

Савченко А.А., А.Г. Борисов А.Г., Кудрявцев И.В., Мошев А.В. Роль Т- и В-клеточного иммунитета в патогенезе онкологических заболеваний. Вопр. онкологии. 61(6):867-875. 2015. [Savchenko A.A., Borisov A.G., Kudryavtsev I.V., Moshev A.V. Role of t- and b-cell immunity in the pathogenesis of cancer. Problems in oncology. 61(6): 867-875. 2015. (In Russ)].

Wang R., Chen P. J. Modulation of Dendritic Cells and NKT Cells by Excessive Exercise in Rats. J. Med. Biol. Engineering. 29(4):190-194. 2009.

Wang R., Chen P. Modulation of NKT Cells and Th1/Th2 Imbalance After alpha-GalCer Treatment in Progressive Load-Trained Rats. Int. J. Biol. Sci. 5(4):338-343. 2009. doi: 10.7150/ijbs.5.338

Kakanis M.W., Peake J., Brenu E.W., Simmonds M., Gray B., Hooper S.L., Marshall-Gradisnik S.M. The Open Window of Susceptibility to Infection After Acute Exercise in Healthy Young Male Elite Athletes. Exerc. Immunol. Rev. 16:119-137. 2010.

Vivier E., Raulet D. H., Moretta A., Caligiuri M. A., Zitvogel L., Lanier L. L., Yokoyama W. M., Ugolini S. Innate or adaptive immunity? The example of natural killer cells. Science. 331(6013):44-49.2011. doi:10.1126/science.1198682011