ПАРВАЛЬБУМИН-СОДЕРЖАЩИЕ ЭНТЕРАЛЬНЫЕ МЕТАСИМПАТИЧЕСКИЕ НЕЙРОНЫ В ПОСТНАТАЛЬНОМ ОНТОГЕНЕЗЕ
PDF

Ключевые слова

метасимпатическая нервная система
интрамуральные ганглии кишки
парвальбумин
кальций-связывающие белки
иммуногистохимия
онтогенез

Как цитировать

Ноздрачев, А. Д., Будник, А. Ф., & Маслюков, П. М. (2019). ПАРВАЛЬБУМИН-СОДЕРЖАЩИЕ ЭНТЕРАЛЬНЫЕ МЕТАСИМПАТИЧЕСКИЕ НЕЙРОНЫ В ПОСТНАТАЛЬНОМ ОНТОГЕНЕЗЕ. Российский физиологический журнал им. И. М. Сеченова, 106(2), 224–230. https://doi.org/10.31857/S0869813920020065

Аннотация

Кальций-связывающий белок парвальбумин селективно экспрессируется в различных популяциях нейронов центральной и периферической нервной системы. Локализация и процентный состав парвальбумин-иммунореактивных нейронов определялся в нейронах метасимпатических энтеральных узлов тонкой и толстой кишки у крыс разного возраста (1, 10, 20, 30, 60 суток и 2 года). В межмышечном сплетении парвальбумин-иммунореактивные нейроны выявляются в онтогенезе с момента рождения и до старости, при этом их процент в межмышечном сплетении тонкой кишки возрастает с 10 по 20 сутки жизни, в межмышечном сплетении толстой кишки - в первые 10 суток жизни. В подслизистом сплетении тонкой и толстой кишки у новорожденных крыс парвальбумин отсутствует и определяется с 10-х суток жизни. Процент парвальбумин-иммунореактивных нейронов в послизистом сплетении увеличивается между 10-ми и 20-ми сутками жизни. При старении доля парвальбумин-иммунореактивных нейронов в межмышечном и подслизистом сплетениях достоверно не меняется. Таким образом, в раннем постнатальном онтогенезе происходит увеличение доли парвальбумин-иммунореактивных нейронов в интрамуральных метасимпатических узлах кишки. Вероятно, данное увеличение связано с буферной ролью парвальбумина в отношении ионов Са2+.

https://doi.org/10.31857/S0869813920020065
PDF

Литература

Schwaller B. The regulation of a cell's Ca2+ signaling toolkit: the Ca (2+) homeostasome. Adv Exp Med Biol. 740: 1-25. 2012.

Simons M.J., Pellionisz A.J. Genomics, morphogenesis and biophysics: triangulation of Purkinje cell development. Cerebellum. 5: 27-35. 2006.

Пермяков Е.А. Кальцийсвязывающие белки. М. Наука. 1993 [Permyakov E.A. Kaltsiysvyazyvayushchiye belki.[Calcium-Binding Proteins]. Moscow. Nauka. 1993 (In Russ)].

Маслюков П.М., Ноздрачёв А.Д., Емануйлов А.И. Возрастные особенности экспрессии кальций-связывающих белков в нейронах ганглиев автономной нервной системы. Успехи геронтологии. 29(2): 247-253. 2016. [Masliukov P.M., Nozdrachev A.D., Emanuilov A.I. Age-related expression of calcium-binding proteins in autonomic ganglionic neurons. Adv Gerontol. 29(2): 247-253. 2016. (In Russ)].

Mitsui R. Immunohistochemical analysis of substance P-containing neurons in rat small intestine. Cell Tissue Res. 343(2): 331-341. 2011.

Qu Z.D., Thacker M., Castelucci P., Bagyánszki M., Epstein M.L., Furness J.B. Immunohistochemical analysis of neuron types in the mouse small intestine. Cell Tissue Res. 334(2): 147-161. 2008.

Endo T., Onaya T. Immunohistochemical localization of parvalbumin in rat and monkey autonomic ganglia. J Neurocytol. 17(1): 73-77. 1988.

Celio M.R. Calbindin D-28k and parvalbumin in the rat nervous system. Neuroscience. 35(2): 375-475. 1990.

Schemann M., Schaaf C., Mäder M. Neurochemical coding of enteric neurons in the guinea pig stomach. J Comp Neurol. 353(2): 161-178. 1995.

Ноздрачев А.Д., Маслюков П.М. Возрастное развитие нейронов автономных ганглиев. СПб. Информ-Навигатор. 2014. [Nozdrachev A.D., Maslyukov P.M. Vozrastnoye razvitiye neyronov avtonomnykh gangliyev [Age development of autonomic ganglionic neurons]. SPb. Inform-Navigator. 2014 (In Russ)].

Masliukov P.M. Sympathetic neurons of the cat stellate ganglion in postnatal ontogenesis: morphometric analysis. Auton Neurosci. 89(1-2): 48-53. 2001.

Маслюков П.М., Ноздрачев А.Д., Timmermans J.P. Возрастные особенности нейротрансмиттерного состава нейронов звездчатого узла. Рос физиол журн им И. М. Сеченова. 92(2): 214-221. 2006. [Masliukov P.M., Nozdrachev A.D., Timmermans J.P. The age specifics of the neurotransmitter composition of the stellate ganglion neurons. Russ J Physiol 92(2): 214-221. 2006. (In Russ].

Маслюков П.М., Будник А.Ф., Ноздрачев А.Д. Нейрохимические особенности узлов метасимпатической системы в онтогенезе. Успехи геронтологии. 30(3): 347-355 2017. [Masliukov P.M., Budnik A.F., Nozdrachev A.D. Developmental changes of neurotransmitter properties in sympathetic neurons. Adv Gerontol. 30(3): 347-355. 2017.(In Russ)].

Masliukov P.M., Moiseev K., Budnik A.F., Nozdrachev A.D., Timmermans J.-P. Development of calbindin- and calretinin-immunopositive neurons in the enteric ganglia of rats. Cell Mol. Neurobiol. 37(7): 1257–1267. 2017.

Furness J.B. The enteric nervous system. Oxford. Blackwell Publishing, 2006.

Permyakov E.A., Uversky V.N., Permyakov S.E. Parvalbumin as a Pleomorphic Protein. Curr Protein Pept Sci. 18(8): 780-794. 2017.

Orduz D., Bischop D.P., Schwaller B., Schiffmann S.N., Gall D. Parvalbumin tunes spike-timing and efferent short-term plasticity in striatal fast spiking interneurons. J Physiol. 591(Pt 13): 3215-3232. 2013.

Obermair G.J., Szabo Z., Bourinet E., Flucher B.E. Differential targeting of the L-type Ca2+ channel alpha 1C (CaV1.2) to synaptic and extrasynaptic compartments in hippocampal neurons. Eur J Neurosci. 8: 2109-2122. 2004.

Gasperini R.J., Pavez M., Thompson A.C., Mitchell C.B., Hardy H., Young K.M., Chilton J.K., Foa L. How does calcium interact with the cytoskeleton to regulate growth cone motility during axon pathfinding? Mol Cell Neurosci. 84: 29-35. 2017.