Аннотация
В клетках собирательных трубок и интерстициальной ткани почечного сосочка крыс линии Вистар методом зимографии выявлены две изоформы гиалуронидазы 1-го типа с молекулярной массой 63 и 73 кДа. Для клеток собирательных трубок основной изоформой был 63 кДа-белок, а в интерстиции - 73 кДа-белок. Использование коллагеназы для получения клеток собирательных трубок не влияло на активность обеих изоформ гиалуронидазы 1-го типа, в то время как инкубация ферментативных экстрактов почечных сосочков с коллагеназой в гораздо большей степени вызывала снижение гиалуронидазной активности 73 кДа-белка по сравнению с 63 кДа-белком. Обсуждаются механизмы постсинтетической модификации изоформ ГИАЛ1.
Литература
Hansell P., Goransson V., Odlind C., Gerdin B., Hallgren R. Hyaluronan content in the kidney in different states of body hydration. Kidney Int. 58: 2061–2068. 2000.
Knepper M.A., Saidel G.M., Hascall V.C., Dwyer T. Concentration of solutes in the renal inner medulla: interstitial hyaluronan as a mechanoosmotic transducer. Am. J. Physiol. Renal Physiol. 284: F433–F446. 2003.
Goransson V., Hansell P., Moss S., Alcorn D., Johnsson C., Hallgren R., Maric C. Renomedullary interstitial cells in culture; the osmolality and oxygen tension influence the extracellular amounts of hyaluronan and cellular expression of CD44. Matrix Biol. 20:129–136. 2001.
Triggs-Raine B., Natowicz M.R. Biology of hyaluronan: Insights from genetic disorders of hyaluronan metabolism. World. J. Biol. Chem. 6(3): 110–120. 2015.
Csoka T.B., Frost G.I., Wong T., Stern R. Purification and microsequencing of hyaluronidase isozymes from human urine. FEBS Lett. 417:307–310. 1997.
Frost G.I., Csoka A.B., Wong T., Stern R. Purification, cloning, expression of human plasma hyaluronidase. Biochem. Biophys. Res. Commun. 236: 10–15. 1997.
Dzgoev S.G. Selective vasopressin V2-agonist desmopressin stimulates blood hyaluronidase activity. Bull. Exp. Biol. Med. 159(4): 424-426. 2015.
Rügheimer L., Olerud J., Johnsson C., Takahashi T., Shimizu K., Hansell P. Hyaluronan synthases and hyaluronidases in the kidney during changes in hydration status. Matrix Biology. 28: 390–395. 2009.
Ikegami-Kawai M., Suzuki A., Karita I., Takahashi T. Increased hyaluronidase activity in the kidney of streptozotocin-induced diabetic rats. J.Biochem. 134(6): 875-880. 2003.
Дзгоев С.Г. Сравнительная характеристика изоформ гиалуронидазы 1-го типа в соматических тканях и сыворотке белых крыс. Рос. физиол. журн. им. И.М. Сеченова. 102(8): 963-967. 2016. [Dzgoev S.G. Comparative characterization of hyaluronidase isoforms of the 1-st type in somatic tissues and serum of white rats. Russ. J. Physiol. 102(8): 963—967. 2016. (In Russ.)].
Stokes J. B., Grupp C., Kinne R.K. Purification of rat papillary collecting duct cells: functional and metabolic assessment. Am. J. Physiol. Renal Physiology. 253(2): F251-F262. 1987.
Laemmli U.K. Cleavage of Structural Proteins During the Assembly of the Head of Bacteriophage T4. Nature. 277: 680-685. 1970.
Bradford M.M. A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding. Anal. Biochem. 72: 248–254. 1976.
Fiszer-Szafarz B., Litynska A., Zou L. Human hyaluronidases: electrophoretic multiple forms in somatic tissues and body fluids. Evidence for conserved hyaluronidase potential N-glycosylation sites in different mammalian species. J. Biochem. Biophys. Methods. 45:103-116. 2000.
Ikegami-Kawai M., Okuda R., Nemoto T., Inada N., Takahashi T. Enhanced activity of serum and urinary hyaluronidases in streptozotocin-induced diabetic Wistar and GK rats. Glycobiology. 14: 65–72. 2004.