МОРФОЛОГИЧЕСКИЕ ОСОБЕННОСТИ ИННЕРВАЦИИ ЭПИКАРДИАЛЬНОЙ ЖИРОВОЙ ТКАНИ КРЫСЫ В РАННЕМ ПОСТНАТАЛЬНОМ ОНТОГЕНЕЗЕ
PDF

Ключевые слова

эпикардиальная жировая ткань крысы
онтогенез
иннервация
белок PGP 9.5
тирозингидроксилаза
синаптофизин
иммуногистохимия

Как цитировать

Чумасов, Е. И., Петрова, Е. С., & Коржевский, Д. Э. (2022). МОРФОЛОГИЧЕСКИЕ ОСОБЕННОСТИ ИННЕРВАЦИИ ЭПИКАРДИАЛЬНОЙ ЖИРОВОЙ ТКАНИ КРЫСЫ В РАННЕМ ПОСТНАТАЛЬНОМ ОНТОГЕНЕЗЕ. Российский физиологический журнал им. И. М. Сеченова, 108(12), 1655–1667. https://doi.org/10.31857/S0869813922120032

Аннотация

Цель исследования - изучение строения и иннервации эпикардиальной жировой ткани (ЭЖТ) аортально-пульмональной области сердца крысы на ранних стадиях развития и половозрелого возраста (1, 14 суток, 3 - 4 месяца). В работе использовали гистологические методы (окраска гематоксилином-эозином и толуидиновым синим), а также иммуногистохимические методы для выявления нервных структур (белка PGP 9.5, тирозингидроксилазы, синаптофизина). Изучен гистогенез и дифференцировка адипоцитов ЭЖТ. Установлено, что презумптивные закладки «жировых подушек» из бурой и белой жировой ткани сердца образуются из «эпителиальных телец», расположенных в основании магистральных сосудов аортально–пульмональной области новорожденной крысы. По мнению авторов, именно эпителиоморфная ткань является камбиальной, служит источником для стволовых клеток жировой ткани. Белая жировая ткань, представленная кольцевидными адипоцитами, является её производной, ответственной за синтез и накопление триглицеридов, составляющей основную часть жирового депо органа. Показано, что гистогенез обоих типов жировой ткани с первого дня рождения сопровождается васкулогенезом. Одновременно в жировой ткани формируются терминальные сплетения из катехоламинергических и холинергических варикозных аксонов, представляющие собой дистантные синаптические аппараты en passant. Установлена следующая закономерность: на ранних стадиях (Р1 - Р14), в период дифференцировки жировых клеток, в ЭЖТ преобладают катехоламинергические постганглионарные симпатические терминальные аксоны. И наоборот, у половозрелых (3 - 4 месяца) животных отмечено выраженное снижение катехоламинергических и преобладание холинергических нервных волокон.

https://doi.org/10.31857/S0869813922120032
PDF

Литература

Афанасьев ЮИ, Колодезникова ЕД (1995) Бурая жировая ткань. Иркутск. ИГУ. [Afanas'ev YuI, Kolodeznikova ED (1995) Brown adipose tissue. Irkutsk. IGU. (In Russ)].

Дедов ИИ, Мельниченко ГА, Бутрова СА (2006) Жировая ткань как эндокринный орган. Ожирение и метаболизм 1: 7–13. [Dedov II, Melnichenko GA, Butrova SA (2006) Adipose tissue as an endocrine organ. Obesity and Metab 1: 7–13. (In Russ)].

Учасова ЕГ, Груздева ОВ, Дылева ЮА, Акбашева ОЕ (2018) Эпикардиальная жировая ткань: патофизиология и роль в развитии сердечно-сосудистых заболеваний. Бюл сибирск мед 17 (4): 254–263. [Uchasova EG, Gruzdeva OV, Dyleva Yu A, Akbasheva OE (2018) Epicardial adipose tissue: pathophysiology and role in the development of cardiovascular diseases. Bull Siber Med 17 (4): 254–263. (In Russ)]. https://doi.org:10.20538 / 1682-0363-2018-4-254-263

Красильникова TB, Симоненкова АВ, Карабицкая НЛ, Шапкова ЕА, Баранова ЕИ (2012) Особенности строения и функционирования жировой ткани в норме и при развитии ожирения. Ученые записки СПбГМУ им акад ИП Павлова 19(3): 99–107. [Krasilnikova EI, Simonenkova AV, Karabitzkaya NL, Shapkova EA, Baranova EI (2012) Features of the adipose tissue structure and functions in the norm and in obesity. Uchenye zapiski SPbGMU im akad IP Pavlova 19(3): 99–107. (In Russ)].

Титов ВН (2015) Функциональное различие висцеральных жировых клеток и подкожных адипоцитов. Клин мед 93 (2): 14–23. [Titov VN (2015) The functional difference between visceral fatty cells and subcutaneous adipoytes. Klin med 93 (2): 14–23. (In Russ)].

BartnessTJ, Ryu V (2015) Neural control of white, beige and brown adipocytes. Int J Obesity Suppl 5: S35. https://doi.org:10.1038/ijosup.2015.9

Mulya A, Kirwan JP (2016) Brown and Beige Adipose Tissue: Therapy for Obesity and Its Comorbidities? Endocrinol Metab Clin North Am 45(3): 605–621. https://doi.org:10.1016/j.ecl.2016

Harms M, Seale P (2013) Brown and beige fat: development, function and therapeutic potential. Nat Med 19(10): 1252–1263. https://doi.org: 10.1038/nm.3361

Chumasov EI, Petrova ES, Korzhevskii DE (2022) Peculiarities of the Innervation of Epicardial Adipose Tissue in a Rat with Aging (Immunohistochemical Study). Advanc Gerontol 12(3): 310–316. https://doi.org:10.1134/S2079057022030055

Sacks HS, Fain JN (2007) Human epicardial adipose tissue: a review. Am Heart J 153(6): 907–917. https://doi.org: 10.1016/j.ahj.2007.03.019

Iacobellis G, Willens HJ (2009) Echocardiographic epicardial fat: a review of research and clinical applications. J Am Soc Echocardiogr 22(12): 1311–1319. https://doi.org:10.1016/j.echo.2009.10.013

McKenney ML, Schultz KA, Boyd JH, Byrd JP, Alloosh M, Teague SD, Arce-Esquivel AA, Fain JN, Laughlin MH, Sacks HS, Sturek M (2014) Epicardial adipose excision slows the progression of porcine coronary atherosclerosis. J Cardiothorac Surg 9: 2. https://doi.org:10.1186/1749-8090-9-2

Payne GA, Kohr MC, Tune JD (2012) Epicardial perivascular adipose tissue as a therapeutic target in obesity-related coronary artery disease. Br J Pharmacol 165(3):659–669. https://doi.org:10.1111/j.1476-5381.2011.01370.x

Giordano A, Morroni M, Santone G, Marchesi GF, Cinti S (1996) Tyrosine hydroxylase, neuropeptide Y, substance P, calcitonin gene-related peptide and vasoactive intestinal peptide in nerves of rat periovarian adipose tissue: an immunohistochemical and ultrastructural investigation. J Neurocytol 25(2):125–136. https://doi.org:10.1007/BF02284791

Chi J, Lin Z, Barr W, Crane A, Zhu XG, Cohen P (2021) Early postnatal interactions between beige adipocytes and sympathetic neurites regulate innervation of subcutaneous fat. Elife10:e64693. https://doi.org:10.7554/eLife.64693

Grigorev IP, Korzhevskii DE (2018) Current technologies for fixation of biological material for immunohistochemical analysis (Review). Modern Technol Med 10(2): 156–165. https://doi.org: 10.17691/stm2018.10.2.19

Коржевский ДЭ, Колос ЕА (2013) Белок PGP 9.5 и его использование в качестве функционального маркера в нейроморфологии. Мед акад журн 13 (4): 29–35. [Korzhevskii DE, Kolos EA (2013) Protein PGP 9.5 and its use as a functional marker in neuromorphology. Med Acad J 13(4): 29–35. (In Russ)].

Колос ЕА, Григорьев ИП, Коржевский ДЭ (2015) Маркер синаптических контактов – синаптофизин. Морфология147(1): 78–82. [Kolos EA., Grigoriyev IP, Korzhevskiy DE (2015) A synaptic marker synaptophysin. Morphologija 147 (1): 78–82. (In Russ)].

Norman D, Mukherjee S, Symons D, Jung RT, Lever JD (1988) Neuropeptides in interscapular and perirenal brown adipose tissue in the rat: a plurality of innervation J Neurocytol 17(3): 305–311. https://doi.org:10.1007/BF01187853

Чумасов ЕИ, Петрова ЕС, Коржевский ДЭ (2018) Развитие субэпикардиального нервного сплетения у крысы в постнатальном периоде. Морфология 154(4): 20–26. [Chumasov EI, Petrova ES, Korzhevskii DE (2018) Development of rat subepicardial nerve plexus in the postnatal period. Morphologija 157 (4): 20–26. (In Russ)].

Himms-Hagen J, Cui J, Lynn Sigurdson S 1990 Sympathetic and sensory nerves in control of growth of brown adipose tissue: Effects of denervation and of capsaicin. Neurochem Int 17(2): 271–279. https://doi.org: 10.1016/0197-0186(90)90149-n

Geerling JJ, Boon MR, Kooijman S, Parlevliet ET, Havekes LM, Romijn JA, Meurs IM, Rensen PC (2014) Sympathetic nervous system control of triglyceride metabolism: novel concepts derived from recent studies. J Lipid Res 55(2):180–189. https://doi.org: 10.1194/jlr.R045013

Chi J, Wu Z, Choi CHJ, Nguyen L, Tegegne S, Ackerman SE, Crane A, Marchildon F, Tessier-Lavigne M, Cohen P (2018) Three-Dimensional adipose tissue imaging reveals regional variation in beige fat biogenesis and PRDM16-Dependent sympathetic neurite density. Cell Metab 27: 226–236. https://doi.org: 10.1016/j.cmet.2017.12.011

Соколов ВИ, Чумасов ЕИ, Атагимов МЗ (2006) Гистогенез интерреналовой закладки надпочечника свиньи (Sus Domestica). Морфология 129(3): 59–62. [Sokolov VI, Chumasov YeI, Atagimov MS (2006) The histogenesis of interrenal primordium of pig (Sus Domestica) adrenal gland. Morphologija 129 (3): 59–62. (In Russ)].

Sanchez-Gurmaches JJ, Hung CM, Sparks CA, Tang Y, Li H, Guertin DA (2012) PTEN loss in the Myf5 lineage redistributes body fat and reveals subsets of white adipocytes that arise from Myf5 precursors. Cell Metab 16: 348–362 https://doi.org: 10.1016/j.cmet.2012.08.003

Чумасов ЕИ, Колос ЕА, Петрова ЕС, Коржевский ДЭ (2020) Иммуногистохимия периферической нервной системы. СПб. СпецЛит. [Chumasov EI, Kolos EA, Petrova ES, Korzhevskij DE (2020) Immunohistochemistry of the peripheral nervous system. SPb. SpecLit. (In Russ)].

De Matteis R, Ricquier D, Cinti S (1998) TH-, NPY-, SP-, and CGRP-immunoreactive nerves in interscapular brown adipose tissue of adult rats acclimated at different temperatures: an immunohistochemical study. J Neurocytol 27(12): 877–886. https://doi.org:10.1023/a:1006996922657