РОЛЬ L-АРГИНИН-NO-СИСТЕМЫ ЭРИТРОЦИТОВ ПРИ РАЗНЫХ ЗНАЧЕНИЯХ ПАРЦИАЛЬНОГО ДАВЛЕНИЯ КИСЛОРОДА
PDF

Ключевые слова

гипоксия
монооксид азота
проточная цитометрия
эритроциты
молсидомин
L-NAME

Как цитировать

Акулич, Н. В., & Зинчук, В. В. (2022). РОЛЬ L-АРГИНИН-NO-СИСТЕМЫ ЭРИТРОЦИТОВ ПРИ РАЗНЫХ ЗНАЧЕНИЯХ ПАРЦИАЛЬНОГО ДАВЛЕНИЯ КИСЛОРОДА. Российский физиологический журнал им. И. М. Сеченова, 108(4), 430–442. https://doi.org/10.31857/S0869813922040021

Аннотация

Проведены исследования по оценке L-аргинин-NO-системы эритроцитов при различных значениях парциального давления кислорода, которые моделировали в перчаточном боксе, замещая кислород азотом. Определение внутриклеточного NO проводили методом проточной цитометрии и спектрофлуориметрии с использованием диацетильного производного 4-амино-5-метиламино-2’,7’-дифторфлуоресцеина. Площадь поверхности эритроцитов измеряли методом морфоденситометрии. Анализ кинетики внутриклеточного содержания NO в эритроцитах методом проточной цитометрии выявил феномен спонтанного роста флуоресценции NO-специфического внутриклеточного зонда, который блокировался предварительным введением ингибитора фермента NO-синтазы. Парциальное давление кислорода и экспозиция воздействия экспериментальных газовых смесей влияет на внутриклеточное содержание NO эритроцитов. Сродство гемоглобина к кислороду в условиях гипоксии зависит от активности фермента NO-синтазы, но не молсидомина. В функционировании эритроцитов при гипоксии принимает участие L-аргинин-NO-системы эритроцитов, изменений площади диффузионной поверхности красных кровяных телец не выявлено; применение молсидомина вызывало рост площади поверхности эритроцитов.

https://doi.org/10.31857/S0869813922040021
PDF

Литература

Mikhael MR, Roshan T, Soe-Lin S, Apte S, Ponka P (2013) Nitrogen monoxide inhibits haem synthesis in mouse reticulocytes. Biochem J 451:61-67. https://doi.org/10.1042/BJ20121649

Buehler PW, Abdu IA (2007) Oxidation of hemoglobin: mechanisms of control in vitro and in vivo. Transfus Alternat in Transfus Med 9:204-212. https://doi.org/10.1111/j.1778-428X.2007.00081.x

Kleinbongard P, Schulz R, Rassaf T, Lauer T, Dejam A, Jax T, Kumara I, Gharini P, Kabanova S, Ozüyaman B, Schnürch HG, Gödecke A, Weber AA, Robenek M, Robenek H, Bloch W, Rösen P, Kelm M (2006) Red blood cells express a functional endothelial nitric oxide synthase. Blood 107:2943-2951. https://doi.org/10.1182/blood-2005-10-3992

Böhmer A, Beckmann B, Sandmann J, Tsikas D (2012) Doubts concerning functional endothelial nitric oxide synthase in human erythrocytes. Blood 119:1322-1323. https://doi.org/10.1182/blood-2011-11-393124

Leo F, Suvorava T, Heuser SK, Li J, LoBue A, Barbarino F, Piragine E, Schneckmann R, Hutzler B, Good ME, Fernandez BO, Vornholz L, Rogers S, Doctor A, Grandoch M, Stegbauer J, Weitzberg E, Feelisch M, Lundberg JO, Isakson BE, Kelm M, Cortese-Krott MM (2021) Red Blood Cell and Endothelial eNOS Independently Regulate Circulating Nitric Oxide Metabolites and Blood Pressure. Circulation 14:870-889. https://doi.org/10.1161/CIRCULATIONAHA.120.049606

Li N, Sul JY, Haydon PG (2003) A calcium-induced calcium influx factor, nitric oxide, modulates the refilling of calcium stores in astrocytes. J Neurosci 23:10302-10310. https://doi.org/10.1523/JNEUROSCI.23-32-10302.2003

Faber DJ, Aalders MC, Mik EG, Hooper BA, van Gemert MJ, van Leeuwen TG (2004) Oxygen saturation-dependent absorption and scattering of blood. Phys Rev Lett 93:028102. https://doi.org/10.1103/PhysRevLett.93.028102

Briggs C (2009) Quality counts: new parameters in blood cell counting. Int J Lab Hematol 31:277-297. https://doi.org/10.1111/j.1751-553X.2009.01160.x

Dybas J, Alcicek FC, Wajda A, Kaczmarska M, Zimna A, Bulat K, Blat A, Stepanenko T, Mohaissen T, Szczesny-Malysiak E, Perez-Guaita D, Wood BR, Marzec KM (2022) Trends in biomedical analysis of red blood cells – Raman spectroscopy against other spectroscopic, microscopic and classical techniques. TrAC Trends Analyt Chem 146:116481.

Helms CC, Gladwin MT, Kim-Shapiro DB (2018) Erythrocytes and Vascular Function: Oxygen and Nitric Oxide. Front Physiol 9:125. https://doi.org/10.3389/fphys.2018.00125

Grygorczyk R, Orlov SN (2017) Effects of Hypoxia on Erythrocyte Membrane Properties-Implications for Intravascular Hemolysis and Purinergic Control of Blood Flow. Front Physiol 8:1110. https://doi.org/10.3389/fphys.2017.01110

Menshikova EB, Zenkov NK, Reutov VP (2000) Nitric oxide and NO-synthases in mammals in different functional states. Biochemistry (Mosc) 65(4):409-426. PMID: 10810177

Hung SP, Ho JH, Shih Y-RV, Lo T, Lee OK (2012) Hypoxia promotes proliferation and osteogenic differentiation potentials of human mesenchymal stem cells. J Orthop Res 30:260-266. https://doi.org/10.1002/jor.21517

Brennan MD, Rexius-Hall ML, Elgass LJ, Eddington DT (2014) Oxygen control with microfluidics. Lab Chip 14:4305-4318. https://doi.org/10.1039/c4lc00853g

Zhao Y, Wang X, Noviana M, Hou M (2018) Nitric oxide in red blood cell adaptation to hypoxia. Acta Biochim Biophys Sinica 50:621–634. https://doi.org/10.1093/abbs/gmy055

Barvitenko NN, Adragna NC, Weber RE (2005) Erythrocyte signal transduction pathways, their oxygenation dependence and functional significance. Cell Physiol Biochem 15:1-18. https://doi.org/10.1159/000083634